基于革蘭氏陽性菌生長曲線等指標評價纖維素基抑菌材料L-Met改性MCC（M-MCC）抑菌效果（二）
1材料與方法
1.1材料與試劑
L.monocytogenes購自美國農業部食品安全檢驗局；S.aureus購自美國模式培養物集存庫。
MCC上海滬試實驗室器材股份有限公司；高碘酸鈉、2，2’-聯氮雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)（2，2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)，ABTS）、L-Met、過硫酸鉀、4’，6-二脒基-2-苯基吲哚（4’，6-diamidino-2-phenylindole，DAPI）（均為分析純）上海麥克林生化科技有限公司；甲醇（色譜純）、二甲基亞砜（分析純）、乙二醇（分析純）廣東光華科技股份有限公司；硼氫化鈉（分析純）江蘇強盛功能化學股份有限公司；無水乙醇（分析純）無錫市亞盛化工有限公司；鹽酸（分析純）南京化學試劑股份有限公司。
1.2儀器與設備
JJ2000B電子天平常熟雙杰測試儀器廠；524G恒溫磁力攪拌器上海梅穎浦儀器儀表制造有限公司；DHG-9240A電熱鼓風干燥箱上海一恒科學儀器有限公司；SCIENTZ-10N冷凍干燥機寧波新芝凍干設備股份有限公司；FE28 pH計、電導率儀瑞士Mettler Toledo公司；恒溫培養箱寧波江南儀器設備有限公司；BKQB75L高壓蒸汽滅菌鍋山東博科生物產業有限公司；M2E全波長酶標儀美國BioTek公司；紫外分光光度計上海精密科學儀器有限公司；LL 600300傅里葉變換紅外光譜（Fourier transform infrared spectroscopy，FTIR）儀美國PerkinElmer公司；Sigma 300掃描電子顯微鏡（scanning electron microscopy，SEM）、LSM900激光共聚焦顯微鏡德國Zeiss公司。
1.3方法
1.3.1 M-MCC的合成總流程
M-MCC的制備總流程如圖1所示。
圖1 NaIO4氧化法制備M-MCC總流程
1.3.2 MCC的氧化活化
原始的MCC樣品性質較為穩定，難以直接進行接枝。需采用高碘酸鈉氧化法對MCC進行開環氧化，生成雙醛基纖維素（dialdehyde cellulose，DAC），再進行下一步的接枝。
MCC氧化成DAC的步驟如下：準確稱取24.063 g高碘酸鈉（NaIO4），用去離子水溶解，轉移到250 mL容量瓶中，超聲30 min使其完全溶解。稱取10 g MCC樣品粉末，置于燒杯中并加入所配的0.37 mol/L NaIO4溶液250 mL，用0.1 mol/L的鹽酸調節pH值到4左右。用錫紙將燒杯完全包裹以營造黑暗條件，以40℃、600 r/min攪拌180 min，隨即加入6 mL乙二醇結束反應，調節pH值到8左右再繼續攪拌30 min，靜置30 min。將所得到的懸浮液倒入3 500 Da的透析袋中透析48 h，期間每8 h將析出溶液更換為去離子水。經冷凍干燥后得到氧化的MCC，即DAC。
1.3.3 L-Met的功能化接枝
稱取10 g上述所得DAC，根據DAC與所用L-Met物質的量比為1∶1稱取L-Met，并將二者混合在250 mL去離子水中，在40℃、400 r/min的條件下攪拌混勻5 min后加入5 mL二甲基亞砜，并繼續攪拌反應6 h。然后加入5 g硼氫化鈉（NaBH4），靜置至無氣泡產生后，加入6 mL無水乙醇終止反應。使用去離子水洗滌所得產物2～3次后，將所得產物轉移至透析袋用去離子水透析48 h，期間每8 h更換去離子水，以除去產物中摻雜的過量離子。最后冷凍干燥得到最終產物M-MCC。
1.3.4 M-MCC表征分析
1.3.4.1微觀形貌及結構
采用SEM對改性后的M-MCC表面微觀結構進行觀察，樣品通過噴金提高電導率后進行測試，在不同放大倍數下進行拍照。
1.3.4.2表面官能團和元素分析
通過FTIR對M-MCC進行表征，掃描范圍為4 000～400 cm-1，以確定材料的成功合成。通過能量色散X射線譜（energy dispersive spectrometer，EDS）以及X射線光電子能譜（X-ray photoelectron spectroscopy，XPS）測試M-MCC中各元素的分布和存在情況。
1.3.4.3 X射線衍射（X-ray diffraction，XRD）和熱重分析
通過XRD表征了M-MCC的晶體結構，射線為CuKα，加速電壓為40 kV，加速電流為15 mA，掃描速率2°/min，掃描范圍2θ為5°～90°。
通過熱重分析儀（thermogravimetric analysis，TGA）表征M-MCC的熱穩定性和受熱分解過程。
1.3.5抑菌性能測定
1.3.5.1 M-MCC的體外抗氧化活性測定
將M-MCC加入去離子水中配制成不同質量濃度梯度的懸浮液，質量濃度梯度設置為0.1、0.5、1、5、10、20 mg/mL。
使用7 mmol/L的ABTS陽離子自由基溶液與過硫酸鉀溶液在25℃黑暗條件下反應12 h，以生成穩定的氧化ABTS陽離子自由基。用0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）稀釋ABTS陽離子自由基溶液至用紫外分光光度計檢測在734 nm波長處的吸光度為0.65～0.75，保存溶液備用。稀釋后的ABTS陽離子自由基溶液取200μL與20μL不同濃度梯度的樣品溶液混勻，并在黑暗條件下靜置反應10 min后在734 nm波長處測定溶液的吸光度。同時以抗壞血酸作為反應的陽性對照。ABTS陽離子自由基清除率按下式計算：
式中：A0為空白實驗組的吸光度（以超純水代替樣品）；A1為樣品吸光度；A2為標準組吸光度（以PBS替代稀釋后的ABTS陽離子自由基溶液）。
1.3.5.2 M-MCC的MIC和最小殺菌濃度（minimum bactericidal concentration，MBC）的確定
MIC是指無法以肉眼觀察到細菌生長的抑菌劑最低抑制濃度。MIC和MBC的測定：將得到的M-MCC以1、5、10、15、20 mg/mL的質量濃度梯度溶解于10 mL的無菌液體培養基中。液體培養基為3 g/100 mL的胰蛋白大豆肉湯。向其中加入100μL濃度為106 CFU/mL的菌懸液，置于37℃恒溫培養箱中培養24 h。觀察菌體生長情況和培養液渾濁情況，24 h后培養液依然澄清的M-MCC最小濃度即為M-MCC的MIC。取100μL培養液均勻涂布在固體培養基表面，置于37℃恒溫培養箱培養24 h，觀察菌落生長情況。沒有菌落生長的最小M-MCC濃度即為M-MCC的MBC。